簡要描述:Quick Cell 發(fā)光法支原體檢測試劑盒是通過檢測支原體的特異性酶活性以達(dá)到檢測體外培養(yǎng)的哺乳動(dòng)物細(xì)胞是否被支原體污染的目的。在支原體裂解后,該支原體特異性的酶,在底物存在下,具有將ADP轉(zhuǎn)化成ATP的功能。
產(chǎn)品分類
Product Category詳細(xì)介紹
品牌 | 其他品牌 | CAS | / |
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分子式 | / | 純度 | / |
分子量 | / | 貨號 | AC16L062 |
規(guī)格 | 50 T | 供貨周期 | 現(xiàn)貨 |
應(yīng)用領(lǐng)域 | 生物產(chǎn)業(yè) |
產(chǎn)品描述
Quick Cell發(fā)光法支原體檢測試劑盒,通過檢測支原體的特異性酶活性以達(dá)到檢測體外培養(yǎng)的哺乳動(dòng)物細(xì)胞是否被支原體污染的目的。
在支原體裂解后,該支原體特異性的酶,在底物存在下,具有將ADP轉(zhuǎn)化成ATP的功能。由于熒光素酶(Luciferase)催化底物熒光素(Luciferin)產(chǎn)生光的反應(yīng)需要ATP的參與,支原體特異性酶催化產(chǎn)生的ATP含量,可以通過該反應(yīng)轉(zhuǎn)化成生物發(fā)光(Bioluminescence)信號,該信號可以使用專門的發(fā)光檢測儀(Luminometer)或具有發(fā)光檢測功能的多功能酶標(biāo)儀進(jìn)行檢測,發(fā)光的強(qiáng)度與ATP的含量成正比。通過比較細(xì)胞培養(yǎng)上清和未用于細(xì)胞培養(yǎng)的培養(yǎng)液上清二者的支原體特異性酶的含量,即可知道培養(yǎng)的細(xì)胞是否被支原體污染。反應(yīng)原理如下:
訂購信息
產(chǎn)品名稱 | 產(chǎn)品貨號 | 規(guī)格 | 價(jià)格 |
Quick Cell 發(fā)光法支原體檢測試劑盒 | AC16L062 | 50 T | 1680 |
運(yùn)輸與保存
干冰運(yùn)輸。-20℃短期保存,-80℃長期保存;有效期60個(gè)月。
使用方法
1.檢測試劑的準(zhǔn)備
產(chǎn)品從-80 ℃冰箱取出,在冰上操作,*使用,分別用2.5 mL支原體檢測溶液溶解試劑A和試劑B(注:因?yàn)樵噭?A 和試劑 B 的離心管容量不足2.5 mL,可以分別先用1 mL 支原體檢測溶液將凍干的試劑 A 和試劑 B 溶解后,轉(zhuǎn)移到一個(gè)5 mL 或10 mL 的離心管中,再各補(bǔ)加1.5 mL 支原體檢測溶液)。按每管50 μL可分別分裝到50個(gè)1.5 mL離心管中,根據(jù)待檢測的樣品數(shù)量及陰性對照數(shù)量確定A、B試劑的用量(不用的試劑放置于-80 ℃冰箱低溫保存,隨用隨?。?。試劑A和試劑B,放室溫5 min左右(注:不能加熱),等其熔解后放冰上待用。
【注】:試劑 A 和試劑 B 只能在每次檢測之前從-80 ℃冰箱取出的,熔解后在室溫放置的時(shí)間盡可能的短,不能超過20 min。熔解后,放冰上的時(shí)間也不能超2 h。已經(jīng)融化后的試劑 A 和試劑 B 不能再次凍存使用。
2.陰性對照的設(shè)置
本試劑盒每次檢測都必須設(shè)置陰性對照。陰性對照除了沒有培養(yǎng)細(xì)胞外其他成分*相同,包括其中的血清批次、含量、抗生素等含量也必須*相同。陰性對照配制完后放于4℃冰箱。如果有些樣品實(shí)在沒有合適的陰性對照或者不知道樣品原來的培養(yǎng)基組成,可以嘗試使用含10%血清的 DMEM 培養(yǎng)基作為陰性對照。
3.陽性對照的設(shè)置
可用已經(jīng)檢測含有支原體污染的樣品作為陽性對照。
4.待測樣品的準(zhǔn)備
為了準(zhǔn)確判斷細(xì)胞是否有支原體的污染,具體操作如下(請嚴(yán)格按照相應(yīng)的體積進(jìn)行操作):
(1)貼壁細(xì)胞待測的細(xì)胞培養(yǎng)3 d且匯合度在70-90%左右時(shí),取180μL-1500μL培養(yǎng)液上清,在普通臺式離心機(jī)上150 g (大約1000 rpm )低速離心 5 min,準(zhǔn)確吸取離心后的上清到一個(gè)新的1.5 mL離心管內(nèi),丟棄含細(xì)胞沉淀的原有離心管。懸浮培養(yǎng)的細(xì)胞需要在換液傳代后,至少讓細(xì)胞生長3 d再取培養(yǎng)液進(jìn)行上述操作。
【注1】:離心力要嚴(yán)格控制在150 g左右,該離心力下,哺乳動(dòng)物細(xì)胞將被沉淀下來而支原體不會(huì)。更高的離心力將可能導(dǎo)致支原體也被離心下來,從而導(dǎo)致假陰性。而更低的離心力將可能導(dǎo)致哺乳動(dòng)物細(xì)胞不能被離心沉淀下來,從而導(dǎo)致支原體經(jīng)測時(shí),哺乳動(dòng)物細(xì)胞內(nèi)的ATP也被釋放到溶液中,從而導(dǎo)致假陽性。
【注2】:待測細(xì)胞上清樣品越多,越有利于支原體污染濃縮富集,1500μL培養(yǎng)液上清,經(jīng)后續(xù)處理后,支原體濃度提高10倍左右。
【注3】:制備好的待測樣品如果不是當(dāng)天立即檢測,放于-80℃冰箱保存,不得放于室溫、4 ℃或-20 ℃冰箱,樣品在-80℃可以保存1 年;為了日后檢測方便,應(yīng)該同時(shí)凍存一些作為陰性對照的培養(yǎng)液。
(2)將含有上清的1.5 mL離心管,在臺式離心機(jī)上16000 g(大約13000 rpm)高速離心5 min,棄去上清。
【注】:切勿讓吸頭碰到離心管底部,底部為可能含有支原體的沉淀。往離心管內(nèi),加入120 μ*期配好的陰性對照培養(yǎng)液。
(3)將上述經(jīng)過離心清洗一次的樣品,再次在普通臺式離心機(jī)上16000 g(大約 13000 rpm)高速離心 5 min,同樣小心吸走離心后的上清并丟棄。
【注】:同樣勿讓吸頭碰到離心管內(nèi)壁的底部外側(cè)。留下大約5 μL培養(yǎng)液的目的也是為了防止吸頭碰到離心管底部外側(cè)而將可能含有支原體的沉淀吸走;注意離心管放置方向與上一次離心時(shí)相同。
(4)向上述經(jīng)過兩次離心清洗的樣品中加入115 μL陰性對照的培養(yǎng)液,用移液槍上下吹吸10-20 次,將可能含有支原體的沉淀吹打均勻,用于后續(xù)支原體檢測(夠兩次檢測使用)。此時(shí),總體積仍然約為120 μL)。
【注】:將培養(yǎng)液替換成陰性對照的培養(yǎng)液是為了排除一些細(xì)胞代謝產(chǎn)物對后續(xù)檢測的可能干擾。
5.支原體樣品檢測
(1)將溶解后的試劑 A、試劑 B放冰上融化(注意:不能加熱),試劑A和試劑B融化后立即用于檢測。試劑A、試劑B融化1 h后,檢測靈敏度開始顯著降低,試劑 A和試劑 B融化后不能反復(fù)凍融使用。
(2)吸取50 μL陰性對照、陽性對照和待測樣品,分別移入不透明(白色或者黑色均可)的96孔板內(nèi),加入50 μL冰上放置的試劑 A,室溫反應(yīng) 15 min。
【注】:不能使用透明的 96 孔板,否則孔與孔之間的發(fā)光值會(huì)互相干擾。
(3)吸取50 μL冰上放置的試劑B,加入到已反應(yīng)15 min的上述反應(yīng)液中,立即在多功能酶標(biāo)儀或者發(fā)光檢測儀(Luminometer)上,以儀器默認(rèn)的螢火蟲熒光素酶(Luciferase)的發(fā)光檢測參數(shù)的參數(shù)進(jìn)行發(fā)光值的檢測,5 min內(nèi),連續(xù)測5次陰性對照和待測樣品的發(fā)光值,計(jì)算各自的平均值。
【注1】:發(fā)光檢測(Luminescence)與熒光檢測(Fluorescence)、吸收光檢測(Absorbtance)是不同的功能。吸收光檢測即常用的 OD 值檢測。熒光檢測(比如常見的 FITC 檢測)需要激發(fā)光,而發(fā)光檢測(如熒光素酶的活性檢測)不需要激發(fā)光。多功能酶標(biāo)儀常見的檢測功能有:吸收光檢測、熒光檢測和發(fā)光檢測,三種功能為獨(dú)立的功能。您如果不清楚您實(shí)驗(yàn)室的酶標(biāo)儀是否具有發(fā)光檢測功能,請咨詢您的實(shí)驗(yàn)室主任或者酶標(biāo)儀廠家。
【注2】:發(fā)光檢測時(shí),應(yīng)該選擇不加載任何濾光片(不同酶標(biāo)儀表達(dá)方式不一樣,可能是:Unfiltered LUM、All wavelengths 或 Open hole)進(jìn)行檢測(此時(shí)讀值較高)或者使用螢火蟲熒光素酶(Luciferase)峰值的發(fā)光波長560 nm進(jìn)行檢測(此時(shí)讀值較低)。
【注3】:可以通過調(diào)節(jié)酶標(biāo)儀的檢測靈敏度(Sensitivity)或延長發(fā)光檢測的時(shí)間(Integration time,Measurement time),盡量讓陰性對照的發(fā)光值大于 1000。
【注4】:如果樣品是無血清細(xì)胞培養(yǎng)上清,相應(yīng)的陰性對照培養(yǎng)基因不含血清,其發(fā)光值可能會(huì)比較低, 甚至只有 100 左右的發(fā)光值,此時(shí)可以在陰性對照培養(yǎng)基中加入10%的胎牛血清或小牛血清,當(dāng)然無血清細(xì)胞上清樣品也必須用含10%的胎牛血清或小牛血清的陰性對照培養(yǎng)基進(jìn)行替換(高速離心后替換,見上述步驟4)后,再進(jìn)行檢測。加入血清后一般可以明顯提高陰性對照的發(fā)光值。
6.結(jié)果判斷
計(jì)算待測樣品的發(fā)光平均值與陰性對照的發(fā)光平均值的比值:
(1)如果比值>1.2,說明待測樣品有支原體污染(陽性)。嚴(yán)重的污染該比值可以達(dá)到10以上。
(2)如果比值在1.1-1.2之間,說明待測樣品可疑有支原體污染(可疑陽性)。該樣品需要繼續(xù)培養(yǎng)24-48小時(shí)后,重新檢測。如果繼續(xù)培養(yǎng)24-48小時(shí)后,重新檢測的比值仍然在1.1-1.2之間,應(yīng)該判為陰性。
(3)如果比值<1.1,說明待測樣品無支原體污染(陰性)。
表1:本試劑盒產(chǎn)品優(yōu)勢
比較內(nèi)容 | 支原體檢測PCR法 | Quick Cell發(fā)光法支原體檢測試劑盒 |
操作時(shí)間 | 3小時(shí) | 0.5小時(shí) |
是否需要樣品處理 | 樣品處理,DNA提取 | 無需樣品處理,直接使用上清 |
區(qū)分支原體活性 | 檢測DNA,不能區(qū)分支原體死活 | 檢測支原體蛋白,檢出活性支原體 |
是否需要電泳 | 需要電泳及染色 | 不需電泳,結(jié)果目測 |
假陽性、假陰性可能 | 有 | 無 |
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